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超濾離心管作業工藝流程
更新時間:2020-12-25   點擊次數:1853次
   超濾離心管分為內管和外管的兩個部分,內管中是帶有一定分子量的膜,當高速離心時,分子量比它小的就漏到下面的管子(即外管)中了,分子量比它大的就截留在上面(即內管中),就是超濾的原理,常用于濃縮樣品。
  超濾離心管作業工藝流程
  1、選擇合適的超濾管主要考慮分子量和濃度:通常靶蛋白的分子量不應大于靶蛋白分子量的1/3。例如,當靶蛋白的分子量為35kDa時,可以選擇靶蛋白分子量為10kDa的超濾管。如果靶蛋白的分子量約為10kd,則可使用分子量為3kd的超濾管。
  2、新購買的超濾是干燥的:使用前加入Milliq水。水的體積*覆蓋在膜上,冰浴或冰箱被預先冷卻幾分鐘。倒出水后,可以加入蛋白質溶液。蛋白質添加量不超過管頂白線。超濾管在加入蛋白質溶液前需要在冰上預先冷卻。
  3、平衡:質量和重心都應該平衡。注意速度和加速度不要太快,否則會直接損壞超濾膜。開始離心超濾(離心預冷至4度)。膜和旋轉軸的方向根據說明進行調整(對于角向離心機,膜垂直于軸)。在實際應用中,一般的速度開度比手動低,可以延長離心管的使用壽命。
  4、當濃縮到剩余的1毫升時,取50μl布拉德福德溶液,加10μl流過,看是否變藍,以判斷UF管是否漏蛋白。如果管道泄漏,重新倒入上層,然后流過新管道開始超濾。為了準確確定管道是否泄漏,用5mg/mlBSA離心10分鐘,然后將其穿過,大致運行膠水或Bradford,繼續添加剩余的蛋白質溶液以濃縮(在冰上操作以防止蛋白質加熱),直到所有濃縮物都添加完畢。離心過程中應注意是否有蛋白質沉淀,導致堵塞。如果發生沉淀,有必要確定沉淀的具體原因是蛋白質濃度過高還是緩沖液不當。前者可以通過多個超濾管同時超濾來降低濃度,而后者通過改變不同的緩沖液直到沒有蛋白質沉淀。
  5、前幾步是用來濃縮蛋白質的,如果要更換緩沖液,當總蛋白溶液濃縮到1毫升左右時,輕輕添加一個新的緩沖液(用0.22um超濾膜超濾后),然后連續濃縮到1毫升左右。濃縮液的終體積取決于所需的蛋白質濃度,通常不超過500ul,但也要濃縮到200ul以下。根據每次至少10次的體積濃度計算,1000次以上的3次基本可以達到更換緩沖器的目的。
  6、提取終濃縮蛋白的操作在冰上進行。黃色槍頭(200ul)用于提取終的蛋白質濃縮物。槍頭沿槍頭邊緣輕輕插入。將蛋白溶液輕輕吹勻。注意不要觸摸超濾膜。吸取濃縮液,一次多吸200ul,直至耗盡。后留在管底的濃縮液不需要吸收,否則太困難,可能損壞超濾膜。后,在無超濾膜的超濾管中加入Milliq水,以防止超濾膜干燥。
  7、將超濾管中的水倒出來,用Milliq水輕輕沖洗幾次。(如管底有可見蛋白質沉淀,可先加水,再用槍頭吹氣,注意不要碰觸膜,吹氣至沉淀懸浮,再倒出,不要沖自來水)然后加入0.2mNaOH溶液,室溫放置20分鐘,平衡超濾。在此期間定量管離心10分鐘,倒出剩余的NaOH溶液,將管芯浸入Milliq燒杯(1L或2L)中。放置數小時,然后用新水替換,放置數小時,不斷稀釋NaOH濃度。50ml管道和蓋子用自來水沖洗,內壁用Milliq水沖洗。
  8、取出浸入水中的芯,并將其加入幾乎滿毫升的水中。在50毫升試管中注入毫升水。慢慢地將芯放入50毫升離心管中,排出一些水。然后蓋上蓋子,4攝氏度存放,直到下次使用。一般來說,根據上述步驟和注意事項,每根渠道在三到四年內不會受損。
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